Efectos del láser GaAs y estiramiento en la contusión muscular en ratones
DOI:
https://doi.org/10.1590/1809-2950/13903823012016Resumen
Láser y estiramiento son utilizados para sanar lesiones musculares. Este estudio tuvo como objetivo evaluar los efectos del láser GaAs y del estiramiento en la morfología del músculo tibial anterior (TA) después de contusión. Treinta y seis ratones (349±23 g) fueron divididos en seis grupos (n=6): grupo control (GC); grupo lesión y láser (GLL); grupo lesión y estiramiento (GLE); grupo lesión, laser y estiramiento (GLLA) y grupo estiramiento (GA). Se realizó lesión en el TA mediante un aparato de contusión. Se utilizó el tratamiento con láser GaAs con dosis de 4,5 J/cm2 durante 32 s, iniciado 48 h después de la lesión, durante 7 días. El estiramiento pasivo manual consistió de 10 repeticiones de 1 minuto de duración, iniciado en el 8º día, 3 veces por semana, durante 3 semanas. Después de 4 semanas, los ratones sufrieron eutanasia para la retirada del TA para análisis de: peso y longitud musculares, área de sección trasversa de las fibras musculares (ASTFM), número de sarcómeros en serie (NSS), longitud de los sarcómeros y porcentaje de tejido conjuntivo. La comparación entre los grupos ocurrió mediante la Anova y post hoc Tukey, con nivel de significancia de ≤0,05. El número de sarcómeros en serie del GLLS fue mayor que el GLS. La longitud de los sarcómeros en el GLA fue superior al GLL, GLLA y GA. En el GA hubo aumento del NSS en comparación con el GC, mientras el porcentaje del tejido conjuntivo del GA disminuyó en comparación al del GLLA. Así, la sarcomerogénesis de los músculos lesionados fue aumentada por el uso del láser, estiramiento y por su asociación. El estiramiento fue suficiente para aumentar el NSS en músculos intactos.Descargas
Referencias
Smith C, Kruger MJ, Smith RM, Myburg KH. The
inflammatory response to skeletal muscle injury: illuminating
complexities. Sports Med. 2008;38(11):947-69. http://dx.doi.
org/10.2165/00007256-200838110-00005
Schaser KD, Disch AC, Stover JF, Lauffer A, Bail HJ, Mittlmeier
T. Prolonged superficial local cryotherapy attenuates
microcirculatory impairment, regional inflammation, and
muscle necrosis after closed soft tissue injury in rats. Am J
Sports Med. 2007;35(1):93-102.
Shu B, Yang Z, Li X, Zhang LQ. Effect of different
intensity pulsedultrasoundon the restoration of rat
skeletalmusclecontusion. Cell Biochem Biophys. 2012;62:329-
http://dx.doi.org/10.1007/s12013-011-9310-5
Falcai MJ, Monte-Raso VL, Okubo R, Zamarioli A, Carvalho
LC, Shimano AC. Biomechanical and histological analysis
of the gastrocnemius in rats subjected to muscle injury
and treatment with low-level laser therapy. Rev Bras
Ortop. 2010; 45(4):444-8. http://dx.doi.org/10.1590/
S0102-36162010000400018
Jarvinen TAH, Jarvinen TLN, Kaariainen M, Kalimo
H. Muscle injuries biology and treatment. Am J
Sports Med. 2005;33(5):745-64. http://dx.doi.
org/10.1177/0363546505274714
Weiss N, Oron U. Enhancement of muscle regeneration
in the rat gastroquinemius muscle by low energy laser
irradiation. Anat Embryol. 1992;186(5):497-503. http://dx.doi.
org/10.1007/BF00185463
Moreira FF, Oliveira ELP, Barbosa FS, Silva JG. Laserterapia
de baixa intensidade na expressão de colágeno após lesão
muscular cirúrgica. Fisioter Pesqui. 2011;18(1):37-42.
Bolton PA, Young SR, Dyson M. Macrophage responsiveness
to light therapy. A dose response study. Laser Ther.
;2:101-6.
Young S, Bolton P, Dyson M, Harvey W, Diamantopoulus C.
Macrophage responsiveness to light therapy. Laser Surg
Med. 1989;9(5):497-505.
Miro L. Estudio capilaroscópico de la acción de un laser GaAs
sobre la microcirculación. Investig Clin Laser. 1984;12:9-14.
Santos DR, Liebano,RE, Baldan CS, Masson IB, Soares RP,
Junior IE. The low-level laser therapy on muscle injury
recovery: literature review. J Health Sci Inst. 2010;28(3):286-8.
Gomes ARS, Coutinho EL, França CN, Polonio J, Salvini TF.
Effect of one stretch a week applied to the immobilized
soleus muscle on rat muscle fiber morphology. Braz J
Med Biol Res. 37(10) 2004. http://dx.doi.org/10.1590/
S0100-879X2004001000005
Boppart MD, Hirshman MF, Sakamoto K, Fielding RA,
Goodyear LJ. Static stretch increases c-Jun NH2-terminal
kinase activity and p38 phosphorylation in rat skeletal
muscle. Am J Physiol Cell Physiol. 2001;280: C352–C8.
Inoue T, Suzuki S, Hagiwara R, Iwata M, Banno Y, Okita M.
Effects of Passive Stretching on Muscle Injury and HSP
Expression during Recovery after Immobilization in Rats.
Pathobiology 2009;76:253-9.
Koh TJ, Peterson JM, Pizza FX, Brooks SV. Passive stretches
protect skeletal muscle ofadult and old mice from lengthening contraction- induced injury. J Gerontol A Biol Sci Med Sci.
;58:592-7.
Hwang JH, Ra Y, Lee KM, Lee JY, Ghil SH. Therapeutic effect
of passive mobilization exercise on improvement of muscle
regeneration and prevention of fibrosis after laceration injury
of rat. Arch Phys Med Rehabil. 2006;87(1):20-6. http://dx.doi.
org/10.1016/j.apmr.2005.08.002
Macedo ACB, Ywazaki JL, Pacheco J, Gonçalves S, Gomes ARS.
Efeitos agudos do alongamento muscular do gastrocnêmio
após contusão em ratos. Fisioter Pesqui. 2014;1(1):53-9.
http://dx.doi.org/10.1590/1809-2950/446210114
Pertille A, Macedo AB, Oliveira CPV. Evaluation of muscle
regeneration in aged animals after treatment with low-level
laser therapy. Rev Bras Fisioter. 2012;16(6):495-501.
Reurink G, Goudswaard GJ, Tol JL, Verhaar JAN, Weir A,
Moen MH. Therapeutic interventions for acute hamstring
injuries: a systematic review. Br J Sports Med. 2012;46:103-9.
Schultz E, Lipton BH. Skeletal muscle satellite cells:
changes in proliferation potential as a function of age.
Mech Ageing Dev. 1982;20(4):377-83. http://dx.doi.
org/10.1016/0047-6374(82)90105-1
Council NR. Guide for the Care and Use of Laboratory
Animals. National Academy Press. Washington, DC; 1996.
p.56-70.]
Minamoto VB, Bunho SR, Salvini TF. Regenerated rat
skeletal muscle after periodic contusions. Braz J Med
Biol Res. 2001;34(11):1447-52. http://dx.doi.org/10.1590/
S0100-879X2001001100012
Minamoto VB, Grazziano CR, Salvini TF. The effect
of single and periodic contusion on the rat soleus
muscle at different stages of regeneration. Anat
Rec. 1999;254(2):281-7. http://dx.doi.org/10.1002/
(SICI)1097-0185(19990201)254:2<281::AID-AR14>3.0.CO;2-Z
Peviani SM, Gomes ARS, Moreira RFC, Moriscot AS, Salvini
TF. Short bouts of stretching increase Myo-D Myostatin and
Atrogin-1 in rat soleus muscle. Muscle Nerve. 2007;35(3):363-
http://dx.doi.org/10.1002/mus.20695
Baxter D. Laserterapia de baixa intensidade. In: Kitchen S, ed.
Eletroterapia: prática baseada em evidências. 11ª ed. Barueri:
Manole;2003. p.171-88.
Ansved T. Effects of immobilization on the rat soleus muscle
in relation to age. Acta Physiol Scand. 1995;154(3):291-302.
http://dx.doi.org/10.1111/j.1748-1716.1995.tb09913.x
Coutinho EL, Gomes ARS, França CN, Oishi J, Salvini T. Effect
of passive stretching on the immobilized soleus muscle fiber
morphology. Braz J Med Biol Res. 2004;37(12):1853-61. http://
dx.doi.org/10.1590/S0100-879X2004001200011
William PE, Catanese T, Lucey EG, Goldspink G. The
importance of stretch and contractile activity in the
prevention of connective tissue accumulation in muscle. J
Anat. 1988;158:109-14.
Mattiello-Sverzut AC, Carvalho LC, Cornachione A,
Nagashima M, Neder L, Shimano AC. Morphological effects
of electrical stimulation and intermittent muscle stretch
after immobilization in soleus muscle. Histol Histopathol.
;21(9):957-64.
Baoge L, Van Den Steen E, Rimbaut S, Philips S, Witvrouw
E, Almqvist KF, et al. Treatment of skeletal muscle injury: A
Review. ISRN Orthopedics. Volume 2012.
Amaral AC, Salvini T. Dose-dependency of low energy HeNe
laser effect in regeneration of skeletal muscle in mice. Lasers
Med Sci. 2001;16(1):44-51.
Peters D, Barash IA, Burdi M, Yuan PS, Mathew L, Fridén
J, Lieber RL. Asynchronous functional, cellular and
transcriptional changes after a bout of eccentric exercise
in the rat. J Physiol. 2003;15(553):947-57. http://dx.doi.
org/10.1113/jphysiol.2003.048462
Coutinho EL, Gomes DC, Salvini T, Vidal BC. Bouts of passive
after immobilization of the rat soleus muscle increase
collagen macromolecular organization and muscle fiber
area. Connect Tissue Res. 2006;47(5):278-86. http://dx.doi.
org/10.1080/03008200600995940
Morrone G, Guzzardella GA, Orientili L, Giavaresi G, Fini M,
Rocca M, Torricelli P, Martini L, Giardino R. Muscular trauma
treated with a Ga-Al-As diode laser: in vivo experimental
study. Laser Med Sci 1998;13(4):293-8. http://dx.doi.
org/10.1007/s101030050011
Tabary, JC.; Tabary, C; Tardieu, C.; Tardieu, G. and Goldspink,
G. Physiological and structural changes in the cat’s soleus
muscle due to immobilization at different lengths by plaster
casts. J. Physiol. 1972;224:231-44.
Williams PE, Goldspink G. The longitudinal growth of striated
muscle fibres. J Cell Sci. 1971;9:751-67.
Williams, PE; Goldspink G.. The effect of immobilization on
the longitudinal growth of striated muscle fibres. J. Anat.
;116:45-55.
Williams PE, Goldspink G. Changes in sarcomere length
and physiological properties in immobilized muscle. J Anat.
;127(Pt 3):459-68.
Järvinen TAH, Järvinen M, Kalimo H. Regeneration of injured
skeletal muscle after the injury. Muscles, Ligaments Tendons
J. 2013;3(4):337-45.
Descargas
Publicado
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2016 Fisioterapia e Pesquisa
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-CompartirIgual 4.0.