Efecto de la asociación entre la laserterapia y la natación en la recuperación morfológica del nervio isquiático y en la recuperación funcional de ratas sometidas a axonotmesis

Autores/as

  • Geraldo Marco Rosa Junior Universidade do Sagrado Coração; Centro de Ciências da Saúde e da Pró-Reitoria de Pesquisa e Pós-Graduação
  • Raiza Maiara Gutierrez Magalhães Universidade do Sagrado Coração; Curso de Fisioterapia
  • Vívian Cristina Rosa Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho; Faculdade de Medicina de Botucatu
  • Cleuber Rodrigo de Souza Bueno Universidade do Sagrado Coração; Curso de Odontologia. Bauru. SP. Brasil
  • Luis Henrique Simionato Universidade do Sagrado Coração; Centro de Ciências da Saúde. Bauru. SP. Brasil
  • Carlos Henrique Fachin Bortoluci Universidade do Sagrado Coração; Centro de Ciências da Saúde. Bauru. SP. Brasil

DOI:

https://doi.org/10.1590/1809-2950/13929623012016

Resumen

Las lesiones de los nervios periféricos frecuentemente ocurren, y generalmente ocasionan pérdida funcional, lo que les causa daño a la vida de los pacientes. En este artículo se propone a verificar la eficacia de la asociación de la laserterapia y de la natación en ratas sometidas a axonotmesis. El muestro se compuso de 50 ratas Wistar. Se las dividieron en 5 grupos: grupo control (GC); grupo control quirúrgico (GCQ); grupo experimental láser (GEL); grupo experimental natación (GEN) y grupo experimental láser asociado con la natación (GELAN). Se aplastó con una pinza durante 60 segundos el nervio en un segmento de 5 mm de extensión cerca de la trifurcación del nervio isquiático. Se empleó el láser infrarrojo AsGa (904 nm) con energía irradiada de 0,4 J en la primera semana, 0,8 J en la segunda y 1,2 J en la tercera y cuarta semanas. Para la evaluación funcional (IFC), se los inmovilizaron los animales y se los pintó con tinta estampilla la región plantar de las patas. Se repitió dicho procedimiento dos veces en cada animal. Se realizó la morfometría (áreas, diámetros y espesuras de las fibras, axónios y vaina de mielina) de los nervios con mensuración de 220 fibras por cada animal de cada grupo. Se notó que los grupos GEL y GEN, en todas las variables morfométricas estudiadas, presentaron los mejores resultados, en comparación con los otros grupos (GC, GCQ y GELAN), sin embargo no presentó diferencia estadísticamente significativa entre ellos. En el análisis funcional se observó que el grupo GELAN tuvo el mejor resultado en comparación con otros grupos (GCQ, GEL y GEN), y al comparar los grupos GEL y GEN no presentaron diferencia estadísticamente significativa. Se concluyó que los grupos GEL y GEN tuvieron mejores resultados morfométricos, mientras que el GELAN presentó el mejor resultado funcional. Por lo que se concluye que la asociación de dichos recursos les favoreció la recuperación funcional de dichos animales.

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Referencias

Sunderland S. A classification of peripheral nerve injuries

producing loss of function. Brain. 1951;74:491-516

Rosberg HE, Carlsson KS, Hojgard S, Lindgren B, Lundborg G,

Dahlin LB. Injury to the human median and ulnar nerves in the

forearm – analysis of costs for treatmentand rehabilitation of

patients in southernsweden. J Hand Surg. 2005;30:35-9.

Kouyoumdjian JA. Peripheral nerve injuries: a retrospective

survey of 456 cases. Muscle Nerve. 2006;34:785-8.

Whitlock EL, Tuffaha SH, Luciano JP, Yan Y, Hunter

DA, Magill CK, Moore AM, Tong AY, Mackinnon SE,

Borschel GH. Processed allografts and type I collagen

conduits for repair of peripheral nerve gaps. Muscle Nerve.

;39(6):787-99.

Rosa-Junior GM, Bueno CRS, Heubel A, Bortoluci CHF,

Simionato LH, Daré LR, Silva MP, Dias DV. Efeito da corrente

alternada simétrica sinusoidal na musculatura estriada

esquelética desnervada experimentalmente. Salusvita.

;32(3):211-25.

Deumens R, Bozkurt A, Meek MF, Marcus MAE, Joosten

EAJ, Weis J, Brook GA. Repairing injured peripheral nerves:

bridging gap. Prog Neurobiol. 2010;92:245-76.

Gigo-Benato D, Geuna S, Rodrigues AC, Tos P, Fornaro M,

Boux E, Battiston E, Giacobini-Robecchi MG. Low-power

laser biostimulation enhances nerve repairafter end-to-side

neurorrhaphy: a double-blind randomized studyin the rat

median nerve model. Lasers Med Sci. 2004;19:57-65.

Rochkind S, El-Ani D, Nevo Z, Shahar A. Increase of

neuronal sprouting and migration using 780nm laser

phototherapy as procedure for cell therapy. Lasers

Surg Med. 2009;41:277-81.

Kisner C, Colby LA. Therapeutic Exercise: Foundations and

Techniques. 5ª ed. Philadelphia; Davis Company, 2007.

Yarrow JF, White LJ, Mccoy SC, Borst SE. Training augments

resistance exercise induced elevation of circulating brain

derived neurotrophic factor (BDNF). Neurosci Letters.

;479:161-5.

Zoladz JA, Pilc A, Majerczak J, Grandys M, Zapart-Bukowska

J, Duda K. Endurance training increases plasma brain-derived

neurotrophic factor concentration in young healthy men. J

Physiol Pharmacol. 2008;59(7):119-32.

Sabatier MJ, Redmon N, Schwartz G, English AW. Treadmill

training promotes axon regeneration in injured peripheral

nerves. Exp Neurol. 2008;211:489-93.

Ilha J, Araujo RT, Malysz T, Hermel EES, Rigon P, Xavier

LL, Achaval M. Endurance and resistance exercise training

programs elicit specific effects on sciatic nerve regeneration

after experimental traumatic lesion in rats. Neurorehabil

Neural Repair. 2008;22(4):355-66.

Udina E, Puigdemasa A, Navarro X. Passive and active

exercise improve regeneration and muscle reinnervation

after peripheral nerve injury in the rat. Muscle Nerve.

;43:500-09.

Cobianchi S, Marinelli S, Florenzano F, Pavone F, Luvisetto

S. Short-but not long-lasting treadmill running reduces

allodynia and improves functional recovery after peripheral

nerve injury. Neuroscience. 2010;168:273-87.

Marqueste T, Marqueste T, Alliez JR, Alluin O, Jammes

Y, Decherchi P. Neuromuscular rehabilitation by treadmill

running or electrical stimulation after peripheral nerve injury

and repair. J Appl Physiol. 2004;96:1988-95.

Van Meeteren N, Brakkee JH, Hamers FP, Helders PJ,

Gispen WH.Exercise training improves functional recovery

and motor nerve conduction velocity after sciatic nerve

crush lesion. Arch Phys Med Rehabil. 1997;78:70-7.

Udina E, Cobianchi S, Allodi I, Navarro X. Effects of activitydependent strategies on regeneration and plasticity after

peripheral nerve injuries. Ann Anat. 2011:1-7.

Gigo-Benato D, Geuna S, Rochkind S. Phototherapy for

enhancing peripheral nerve repair: a review of the literature.

Muscle Nerve. 2005;31:694-701.

Barbosa RI, Marcolino AM, Guirro RRJ, Mazzer N, Barbieri CH,

Fonseca MCR. Efeito do laser de baixa intensidade (660nm)

na regeneração do nervo isquiático lesados em ratos. Fisioter

Pesqui. 2010;17(4):294-9.

Wang L, Hu L, Grygorczyk R, Shen X, Schwarz W. Modulation

of extracellular atp content of mast cells and drg neurons by

irradiation: studies on underlying mechanism of low-levellaser therapy. Mediators of Inflammation, Article ID 630361,

pages, 2015. doi:10.1155/2015/63036.

Martins F, Rennó ACM, Oliveira F, Minatel NP, Bortolin JA,

Quintana HT, Aveiro MC. Low-level laser therapy modulates

musculoskeletal loss in a skin burn model in rats. Acta Cirúrg

Bras. 2015;30(2):94-9.

Wang CZ, Chen YJ, Wang YH, Yeh ML, Huang MH, Ho ML,

Liang JI, Chen CH. Low-level laser irradiation improves

functional recovery and nerve regeneration in sciatic nerve

crush rat injury model. PloS One. 2014;9(8):103-348.

Huang Y.Y, Sharma SK, Carroll J, Hamblin MR. Biphasic

dose response in low level light therapy-an update. DoseResponse. 2011;9(4):602-18.

Endo C, Barbieri CH, Mazzer N, Fasan VS. A laserterapia

de baixa intensidade acelera a regeneração de nervos

periféricos. Acta Ortop Bras. 2008;16(5):305-10.

Camargo VM, Costa J, André ES. Estudo comparativo entre

dois tipos de raio laser de baixa potência e seus respectivos

efeitos sobre a regeneração nervosa periférica. Fisioter Mov.

;9(2):127-34.

Bain JR, Mackinnon SE, Hunter DA. Functional evaluation of

complete sciatic peroneal and posterior tibial nerve lesions in

the rat. Plast Reconstr Surg. 1989;83(1):129-33.

De Medinaceli L, Freed WJ, Wyatt RJ. An index of the functional

condition of rat sciatic nerve based on measurements made

from walking tracks. Exp Neurol. 1982;77(3):634-43.

Câmara CN, Brito MV, Silveira EL, Silva DS, Simões VR, Pontes

RWR. Histological analysis of low-intensity laser therapy

effects in peripheral nerve regeneration in Wistar rats. Acta

Cir Bras. 2011;26:12-8.

Seddon HJ. The use of autogenous grafts for the repair of

large gaps in peripheral nerves. Brit J Surg. 1947;35:151-67.

Oliveira LS, Sobral LL, Takeda SYM, Betini J, Guirro RRJ,

Somazz MC, Teodori RM. Electrical stimulation and

swimming in the acute phase of axonotmesis: their influence

on nerve regeneration and functional recovery. Rev Neurol.

;47:11-5.

Sobral LL, Oliveira LS, Takeda SYM, Somazz MC, Montebelo

MIL, Teodori RM. Immediate versus later exercises for rat sciatic

nerve regeneration after axonotmesis: histomorphometric

and functional analyses. Rev Bras Fisioter. 2008;12(4):311-6.

Vaynman S, Gomez-Pinilla F. License to run: Exercise impacts

functional plasticity in the intact and injured central nervous

system by using neurotrophins. Neurorehabil Neural Repair.

;19:283-95.

Asensio-Pinilla E, Udina E, Jaramillo J, Navarro X. Electrical

stimulation combined with exercise increase axonal

regeneration after peripheral nerve injury. Exp Neurol.

;219:258-65.

Reis FA, Belchior ACG, Nicolau RA, Fonseca TS, Carvalho PTC.

Efeito da terapia com laser de arsenieto de gálio e alumínio

(660nm) sobre a recuperação do nervo ciático de ratos após

lesão por neurotmese seguida anastomose epineural: análise

funcional. Ver Bras. Fisioter. 2008;12(3):215-21.

Barbosa RI, Marcolino AM, Guirro RRJ, Mazzer N, Barbieri CH,

Fonseca MCR. Comparative effects of wavelengths of lowpower laser in regeneration of sciatic nerve in rats following

crushing lesion. Lasers Surge Med. 2010;42:673-82.

Pistarini LCY. Ação in vivo do potencial regenerative na

degeneração walleriana de nervos periféricos com utilização

de laser de baixa potência e composto polivitamínico

β-nerve®. São Paulo. Dissertação. [Mestre em ciências na área

de tecnologia nuclear – materiais] – Instituto de Pesquisas

Energéticas e Nucleares; 2015.

Sousa FA, Ribeiro TL, Fazan VPA, Barbieri CH. Lack of

effectiveness of laser therapy applied to the nerve course

and the correspondent medullary roots. Acta Ortop Bras.

;21(2): 92-7.

Lins RDAU, Dantas EM, Lucena KCR, Catão MHCV, GranvilleGarcia AF, Carvalho Neto LG. Biostimulation effects of

low-power laser in the repair process. An Bras Dermatol.

;85(6):849-55.

Noronha L, Chin EWK, Kimura LY, Graf R. Estudo

morfométrico e morfológico da cicatrização após uso do laser erbium: YAG em tecidos cutâneos de ratos. J Bras Patol

Med. 2004;40(1):41-8.

Lucas C, Gemert MJC, Haan RJ. Efficacy of low-level laser

therapy in the management of stage III decubitus ulcers:

a prospective, observer-blinded multicentre randomized

clinical trial. Lasers Med Sci. 2003;18:72-7.

Hamblin MR, Demidova TN. Mechanisms of low level light

therapy. Society of Photographic Instrumentation Engineers.

;61(40):1-12.

Buchaim RL, Andreo JC, Barravieira, B, Ferreira-Junior RS, Buchaim

DV, Rosa-Junior GM, Oliveira ALR, Rodrigues AC. Effect of lowlevel laser therapy (LLLT) on peripheral nerve regeneration using

fibrin glue derived from snake venom. Injury. 2015;46:655-60.

Publicado

2016-03-03

Número

Sección

Pesquisa Original

Cómo citar

Efecto de la asociación entre la laserterapia y la natación en la recuperación morfológica del nervio isquiático y en la recuperación funcional de ratas sometidas a axonotmesis . (2016). Fisioterapia E Pesquisa, 23(1), 12-20. https://doi.org/10.1590/1809-2950/13929623012016