Caracterização de doenças em potros clonados na Colômbia, o efeito das patologias da placenta no sucesso e sobrevivência de potros clonados de duas linhagens celulares diferentes

Autores

DOI:

https://doi.org/10.11606/issn.1678-4456.bjvras.2024.211804

Palavras-chave:

Clones, Morbidade, Placentite, Éguas, Mortalidade

Resumo

Potros clonados nascidos em diferentes programas de clonagem nos EUA, na Argentina e, recentemente, na Colômbia sofreram diversas entidades patológicas durante a gravidez e o período neonatal. Essas entidades incluem abortos, natimortos, encefalopatia hipóxica-isquêmica e grandes remanescentes umbilicais e deformidade angular no membro anterior. Os objetivos deste estudo foram determinar que potros clonados sofrem de doenças semelhantes e apresentam a mesma taxa de mortalidade que potros não clonados e se existem diferenças entre potros clonados de duas linhagens celulares diferentes (células fibroblásticas e de medula óssea); e também, estabelecer se éguas portadoras de potros clonados de diferentes linhagens celulares apresentam parâmetros ultrassonográficos, paraclínicos e de perfil hormonal iguais aos de gestações tradicionais, além de determinar se há diferenças entre os potros clonados das duas diferentes linhagens celulares. Na análise das variáveis contínuas foram estabelecidas diferenças médias significativas nos três grupos de éguas no PCV, hemoglobina, contagem de eritrócitos, VCM, MCH, proteínas e globulinas séricas e na contagem de linfócitos p<0,05. Foi feita uma análise de risco para morbimortalidade associada à origem celular da linhagem celular do clone e sua gestação quando utilizados testes qui-quadrado sequencial e regressão logística e foi considerado estatisticamente significativo p< 0,05. Uma análise de componentes principais dos achados paraclínicos das éguas com o desfecho do potro e os parâmetros paraclínicos dos potros divididos por origem da gestação foi realizada para avaliar os componentes da variável resposta e sua dinâmica. Foram estudadas 34 gestações de clones de origem fibroblástica, 26 gestações de clones de origem medular óssea e 32 gestações de não clones. Verificou se que a apresentação de doenças placentárias compatíveis com placentite foi significativamente mais frequente (p= 0,026) em éguas com potros clonados de linhagens celulares fibroblásticas. A sepse neonatal foi considerada a doença mais frequente e foi diagnosticada mais comumente em potros de origem fibroblástica – aumento do risco (OR 37) (p=0,0006). O risco de morte foi positivo e significativo com os potros da linha celular de fibroblastos (OR: 9,1. P<0,01) em comparação com os potros clonados de origem celular medular e potros não clonados. O risco de morte pode ser previsto no período neonatal e alguns indicadores encontrados neste estudo, como sinais relacionados à placentite, estão associados ao aumento da mortalidade neonatal e são mais frequentes em potros de origem fibroblástica.

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Referências

Adams-Brendemuehl C, Pipers FS. Antepartum evaluations of the equine fetus. J Reprod Fertil Suppl. 1987;35:565-73. PMid:3316646.

Brewer BD, Koterba A, Carter R, Rowe ED. Comparison of empirically developed sepsis score with a computer generated and weighted scoring system for the identification of sepsis in the equine neonate. Equine Vet J. 1988;20(1):23-4. http://doi.org/10.1111/j.20423306.1988.tb01446.x. PMid:3284743.

Bucca S, Fogarty U, Collins A, Small V. Assessment of feto-placental well-being in the mare from mid-gestation to term: transrectal and transabdominal ultrasonographic features. Theriogenology. 2005;64(3):542-57. http://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.05.011. PMid:15993936.

Canisso I, Ball BA, Erol E, Squires EL, Troedsson MH. Comprehensive review on equine placentitis. In: Proceedings of the 61st Annual Convention of the American Association of Equine Practitioners; 2015 Dec 5-9; Las Vegas, Nevada, USA. Lexington: AAEP; 2015. p. 490-509.

Corley KTT, Donaldson LL, Furr MO. Arterial lactate concentration, hospital survival, sepsis and SIRS in critically ill neonatal foals. Equine Vet J. 2005;37(1):53-9. http://doi.org/10.2746/0425164054406856. PMid:15651735.

Curcio BR, Nogueira CEW, Pazinato FM, Borba LA, Feijo LS, Scalco R, Canisso IF. Plasma estradiol-17b concentrations in mares treated for experimentally induced ascending placentitis. J Equine Vet Sci. 2018;66:243. http://doi.org/10.1016/j.jevs.2018.05.130.

Dembek K, Timko K, Moore C, Johnson L, Frazer M, Barr B, Toribio R. Longitudinal assessment of adrenocortical steroid and steroid precursor response to illness in hospitalized foals. Domest Anim Endocrinol. 2023;82:106764. http://doi.org/10.1016/j.domaniend.2022.106764. PMid:36162341.

Douglas RH. Endocrine diagnostics in the broodmare: what you need to know about progestins and estrogens. In: Proceedings of the Annual Meeting for the Society for Theriogenology and American College of Theriogenologists; 2004 Aug 4-7, Lexington, KY. Providence: ACT; 2004. p. 106-15.

Franco Ayala MS, Oliver Espinosa OJ. Estudio de la morbilidad, mortalidad y de enfermedades en potros de caballo criollo colombiano durante los 30 primeros días de vida en la sabana de Bogotá. Rev Med Vet. 2015;(30), 67-82.

Giguère S, Polkes AC. Immunologic disorders in neonatal foals. Vet Clin North Am Equine Pract. 2005;21(2):241-72. http://doi.org/10.1016/j.cveq.2005.04.004. PMid:16051049.

Hashizume K, Ishiwata H, Kizaki K, Yamada O, Takahashi T, Imai K, Patel OV, Akagi S, Shimizu M, Takahashi S, Katsuma S, Shiojima S, Hirasawa A, Tsujimoto G, Todoroki J, Izaike Y. Implantation and placental development in somatic cell clone recipient cows. Cloning Stem Cells. 2002;4(3):197-209. http://doi.org/10.1089/15362300260339485. PMid:12398801.

Hendriks WK, Colenbrander B, van der Weijden GC, Stout TA. Maternal age and parity influence ultrasonographic measurements of fetal growth in Dutch Warmblood mares. Anim Reprod Sci. 2009;115(1-4):110-23. http://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2008.12.014. PMid:19157730.

Hill JR, Roussel AJ, Cibelli JB. Clinical and pathologic features of cloned transgenic calves and fetuses (13 case studies). Theriogenology. 1999;51:1451–1465.

Hill JR, Schlafer DH, Fisher PJ, Davies CJ. Abnormal expression of trophoblast major histocompatibility complex class i antigens in cloned bovine pregnancies is associated with a pronounce endometrial lymphocytic response. Biol Reprod. 2002;67(1):55-63. http://doi.org/10.1095/biolreprod67.1.55. PMid:12079999.

Hofsaess FR. Time of antibody absorption in neonatal foals. J Equine Vet Sci. 2001;21(4):158-9. http://doi.org/10.1016/ S0737-0806(01)70119-0.

Johnson AK, Hinrichs K. Neonatal care and management of foals derived by somatic cell nuclear transfer. Methods Mol Biol. 2015;1330:189-201. http://doi.org/10.1007/978-1-4939-2848-4_16. PMid:26621599.

Johnson AK, Clark-Price SC, Choi Y-H, Hartman DL, Hinrichs K. Physical and clinicopathologic findings in foals derived by use of somatic cell nuclear transfer: 14 cases (2004-2008). J Am Vet Med Assoc. 2010;236(9):983-90. http://doi.org/10.2460/javma.236.9.983. PMid:20433399.

Katz L. Perinatal asphyxia syndromein a quarter horse foal. Vet Clin North Am Equine Pract. 2006;22(1):193-208. http://doi.org/10.1016/j.cveq.2005.12.007. PMid:16627116.

Kohan-Ghadr HR, Lefebvre RC, Fecteau G, Smith LC, Murphy BD, Suzuki Junior J, Girard C, Hélie P. Ultrasonographic and histological characterization of the placenta of somatic nuclear transfer-derived pregnancies in dairy cattle. Theriogenology. 2008;69(2):218-30. http://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2007.09.028. PMid:17983647.

Koterba A, Brewer B, Tarplee F. Clinical and clinicopathological characteristics of the septicaemic neonatal foal: review of 38 cases. Equine Vet J. 1984;16(4):376-82. http://doi.org/10.1111/j.2042-3306.1984.tb01950.x. PMid:6479139.

Lagutina I, Lazzari G, Duchi R, Colleoni S, Ponderato N, Turini P, Crotti G, Galli C. Somatic cell nuclear transfer in horses: effect of oocyte morphology, embryo reconstruction method and donor cell type. Reproduction. 2005;130(4):559- 67. http://doi.org/10.1530/rep.1.00772. PMid:16183874.

Lavan RP, Craychee T, Madigan JE. Practical method of umbilical ultrasonographic examination of One-week old foals: the procedure and the interpretation of Agecorrelated size ranges of umbilical structures. J Equine Vet Sci. 1997;17(2):96-101. http://doi.org/10.1016/S0737-0806(97)80346-2.

Lester GD. Maturity of the neonatal foal. Vet Clin North Am Equine Pract. 2005;21(2):333-55. http://doi.org/10.1016/j.cveq.2005.04.001. PMid:16051053.

MacKay RJ. Neurologic disorders of neonatal foals. Vet Clin North Am Equine Pract. 2005;21(2):387-406. http://doi.org/10.1016/j.cveq.2005.04.006. PMid:16051055.

Magdesian G. Neonatal foal diarrhea. Vet Clin North Am Equine Pract. 2005;21(2):295-312. http://doi.org/10.1016/j.cveq.2005.04.009.

Meijer M, Macpherson ML, Dijkman R. How to use umbilical vessel water infusion to treat retained fetal membranes in mares. In: Proceedings of the 61st Annual Convention of the American Association of Equine Practitioners; 2015 Dec 5-9; Las Vegas, Nevada, USA. Lexington: AAEP; 2015. p. 478-84.

Müller V, Curcio BR, Toribio RE, Feijó LS, Borba LA, Canisso IF, Nogueira CE. Cortisol, progesterone, 17αOHprogesterone, and pregnenolone in foals born from mare’s hormonetreated for experimentally induced ascending placentitis. Theriogenology. 2019;123:139-44. http://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2018.06.024. PMid:30308389.

Olivera R, Moro LN, Jordan R, Luzzani C, Miriuka S, Radrizzani M, Donadeu X, Vichera G. In vitro and in vivo development of horse cloned embryos generated with iPSCs, mesenchymal stromal cells and fetal or adult fibroblasts as nuclear donors. PLoS One. 2016;11(10):e0164049. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0164049. PMid:27732616.

Olivera R, Moro LN, Jordan R, Luzzani C, Miriuka SG, Vichera G. 37 healthy foals produced using bone marrowmesenchymal stem cells as nuclear donors in horse cloning. Reprod Fertil Dev. 2018a;30(1):158. http://doi.org/10.1071/RDv30n1Ab37.

Olivera R, Moro LN, Jordan R, Pallarols N, Guglielminetti A, Luzzani C, Miriuka SG, Vichera G. Bone marrow mesenchymal stem cells as nuclear donors improve viability and health of cloned horses. Stem Cells Cloning. 2018b;11:13-22. http://doi.org/10.2147/SCCAA.S151763. PMid:29497320.

Palmieri C, Loi P, Ptak G, Della Salda L. Review paper: a review of the pathology of abnormal placentae of somatic cell nuclear transfer clone pregnancies in cattle, sheep, and mice. Vet Pathol. 2008;45(6):865-80. http://doi.org/10.1354/vp.45-6-865. PMid:18984789.

Panzani S, Comin A, Galeati G, Romano G, Villani M, Faustini M, Veronesi MC. How type of parturition and health status influence hormonal and metabolic profiles in newborn foals. Theriogenology. 2012;77(6):1167-77. http://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2011.10.023. PMid:22153270.

Pozor MA, Sheppard B, Hinrichs K, Kelleman AA, Macpherson ML, Runcan E, Choi YH, Diaw M, Mathews PM. Placental abnormalities in equine pregnancies generated by SCNT from one donor horse. Theriogenology. 2016;86(6):1573–1582. https://doi.org/10.1016/.theriogenology.2016.05.017.

Rapacz-Leonard A, Leonard M, Chmielewska-Krzesińska M, Paździor-Czapula T, Janowski T. Major histocompatibility complex class I in the horse (Equus caballus) placenta during pregnancy and parturition. Placenta. 2018;74(15):36-46. http://doi.org/10.1016/j.placenta.2018.12.006

Rojas ER, Franco MS, Toro GJ. Memorias del I Simposio Latinoamericano de Reproducción Asistida en Equinos. Cordoba: Instituto de Reproduccion Animal Cordoba; 2019. p 69-80. Stoneham SJ. Repiratory distress in the neonatal foal. Equine Vet Educ. 1998;10(5):242-9. http://doi.org/10.1111/j.2042-3292.1998.tb00886.x.

Toribio RE. Equine neonatal encephalopathy: facts, evidence, and opinions. Vet Clin North Am Equine Pract. 2019;35(2):363-78. http://doi.org/10.1016/j.cveq.2019.03.004. PMid:31088699.

Trumble TN. Orthopedic disorders in neonatal foals. Vet Clin North Am Equine Pract. 2005;21(2):357-85. Wilkins PA. Lower respiratory problems of the neonate. Vet Clin North Am Equine Pract. 2003;19(1):19-33, v. http://doi.org/10.1016/S0749-0739(02)00064-0. PMid:12747659.

Wohlfender FD, Barrelet FE, Doherr MG, Straub R. Diseases in neonatal foals. Part 1: the 30 day incidence ofdisease and the effect of prophylactic antimicrobial drug treatment during the first three days post partum. Equine Vet J. 2009;41(2):179-85. http://doi.org/10.2746/042516408X345116. PMid:19418748.

Woods GL, White KL, Vanderwall DK, Li GP, Aston KI, Bunch TD, Meerdo LN, Pate BJ. A mule cloned from fetal cells by nuclear transfer. Science. 2003;301(5636):1063. http://doi.org/10.1126/science.1086743. PMid:12775846.

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2024-06-13

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Ayala MSF, Espinosa OO. Caracterização de doenças em potros clonados na Colômbia, o efeito das patologias da placenta no sucesso e sobrevivência de potros clonados de duas linhagens celulares diferentes. Braz. J. Vet. Res. Anim. Sci. [Internet]. 13º de junho de 2024 [citado 30º de junho de 2024];61:e211804. Disponível em: https://periodicos.usp.br/bjvras/article/view/211804